骨關節炎（ osteoarthritis,OA） 是一種隨年齡增長而發生率明顯增加的退行性關節疾病，其發病是一個多因素參與的復雜過程[1],至今其病因和發病機理仍不是十分清楚。大量研究表明，關節軟骨的退變被認為是引起 OA 和 OA 發展過程中最重要的病理環節[2-3].軟骨細胞作為軟骨的唯一細胞成分，其細胞的生物學特性的變化和 OA 的發生發展密切相關[4-6].
軟骨細胞體外培養是了解軟骨細胞生物學性狀和軟骨細胞分化、增殖及軟骨基質合成過中影響因素的重要方法，同時也是尋找有效地防治療 OA 的重要基礎。由于 OA 本身存在的病理特征如軟骨的大量磨損和退變，導致體外分離培養骨關節炎患者軟骨細胞存在較大難度。因而目前針對骨關節炎的細胞水平的研究，大部分集中在動物關節軟骨細胞的體外培養及相關研究領域[7-9].
然而人骨關節炎是一個多因素的結果，單純依靠體外的模型獲得的 OA 軟骨細胞可能并不能真正意義上替代人的OA 軟骨細胞，從而喪失其研究結果對臨床的指導意義。因此，從臨床上分離培養的人 OA 軟骨細胞可能是 OA 研究的最佳對象。我們對人 OA 軟骨細胞的分離、消化和培養進行了初步的研究，并對其細胞形態學特點進行了評價，為后期關于人 OA 軟骨細胞水平的相關研究提供實驗基礎。
1 資料與方法
1. 1 研究對象及樣本來源 所有標本均取自于四川大學華西醫院骨科 10 例晚期骨關節炎行全膝關節置換患者，取材位置位于股骨內、外髁負重過渡區的關節軟骨組織。其中男3例 ,女7 例 ; 年齡 （ 61 . 7 ± 6 . 69 ） 歲 ; 體重指數 （ 27 . 50 ±1. 28） .骨關節炎的診斷標準參照美國風濕病學會膝骨關節炎診斷標準[10],嚴格排除免疫性及其他可能影響膝關節病情的合并癥，所有患者術前經全科討論意見一致。該研究獲得醫院倫理委員會的批準，所有患者術前均經其本人知情同意。
1. 2 實驗試劑與儀器 主要實驗試劑： DMEM 低糖培養基、0. 01mol 磷酸鹽緩沖液、0. 25% 胰蛋白酶、L-谷氨酰胺、青-鏈霉素、Ⅱ型膠原酶、二型膠原抗體、胎牛血清、Cell CountingKit-8、SYBR\ue4d2Premix Ex TaqTMⅡ、TRIzol、二甲基亞砜、四甲基偶氮唑鹽、DAB 顯色試劑盒。實驗設備： 超凈工作臺（ Heraeus 公司，德國） 、水浴搖床（ memmert 公司，德國） 、倒置相差顯微鏡（ olympus 公司，日本） 、37℃ 5% CO2孵育箱（ sanyo 公司，日本） 、多功能酶標儀、離心機、電泳儀、微量天平等。
1. 3 軟骨細胞獲取及培養方法
1. 3. 1 軟骨細胞的分離培養 膝關節置換術中在無菌條件下顯露膝關節軟骨組織，以銳利刀片取 OA 患者軟骨組織（ 股骨髁和脛骨平臺） ,用生理鹽水沖洗 3 次，尖刀片刮除軟骨膜后生理鹽水再次沖洗 2 ~ 3 次，放入無菌的裝有適量DMEM 低糖培養基（ 鏈霉素 100 U / mL,青霉素 100 U / mL） 的50 mL 無菌離心管中立即轉送至實驗室。采用兩步消化法分離關節軟骨細胞，將軟骨組織移入無菌培養皿中并用 PBS液沖洗 3 次，仔細將附帶的軟組織或滑液去除，移入加有少量培養基的抗生素小瓶內，干凈無菌眼科剪機械粉碎至 1mm3以下。之后再將組織塊轉入另一 50 mL 無菌離心管中，1 000 r / min 低溫離心 5 min,隨后加入 5 倍體積的 0. 25% 胰蛋白酶消化 20 min,棄去上清液，用低糖 DMEM 培養基洗滌2 ~ 3 次。加入 5 倍體積的含 0. 2% Ⅱ型膠原酶低糖 DMEM溶液，置 37℃水浴箱中輕微振蕩消化，一般消化 4 ~ 5 次，每次25 min,每次消化后靜置 5 min 取上清液，移入事先盛有血清及低糖 DMEM 培養基的離心管中終止消化，然后 1400 r/min 離心 5 min,棄去上清液，再用低糖 DMEM 培養基洗滌 2次后待接種，每次如此分時段收集細胞，以免先消化下來的軟骨細胞因消化時間過長活性下降。匯合分時段收集的細胞懸液，200 目金屬濾網過濾細胞懸液（ 用以除去雜質） ,所得細胞沉淀經吹打后移入含 20% 胎牛血清的低糖 DMEM 培養基的25 cm2培養瓶中，置于37℃，恒溫，5%CO2,飽和濕度培養箱內培養，隔 2 d 換液。
1. 3. 2 傳代及鑒定前準備 原代培養細胞覆蓋瓶底 80% 以上時，吸盡培養基，PBS 液清洗 2 ~3 次后加入 0. 25% 胰蛋白酶，37℃，5%CO2 孵育箱消化 2 ~ 3 min,待鏡下觀察大部分細胞變圓漂浮時，加入 20% 含胎牛血清培養基終止消化，并適度拍打培養瓶底以幫助貼壁細胞順利脫壁，1 000 r/min,離心 3 min 后加入適量 20%胎牛血清 DMEM 培養基重懸，血球計數板計數，104/ mL 傳代接種進入傳代培養。同時使用血蓋片準備進行細胞爬片，Ⅱ型膠原免疫組化及甲苯胺藍染色進行細胞形態學的進一步鑒定。
1. 3. 3 軟骨細胞爬片的制作和固定 每孔收集細胞 8 × 104個，種植于 6 孔細胞培養板（ 底部放入血蓋片） ,37℃，5%CO2條件下，培養至血蓋片上軟骨細胞融合率達到 80%; 移除培養基，以 PBS 液沖洗 3 次，每次 1 min; 4%多聚甲醛固定10 min; 雙蒸水沖洗 3 次，將細胞爬片分開； - 80℃ 長期保存，用時室溫自然解凍。
1. 4 檢測指標
1. 4. 1 倒置相差顯微鏡觀察 在軟骨細胞分離培養以及傳代培養的各個時期通過倒置相差顯微鏡觀察 OA 軟骨細胞的形態、貼壁生長情況、生長特性及細胞密度，并拍照保存。
1. 4. 2 甲苯胺藍染色 對各代關節軟骨細胞用爬片技術，待細胞基本長滿后，取出細胞爬片，PBS 液沖洗 3 次，4% 多聚甲醛室溫固定 20 min,自來水漂洗 15 min,雙蒸水沖洗 3次，放于染色架上，1% 甲苯胺藍染色 30 min,雙蒸水洗去多余的染液，100%無水乙醇脫水，中性樹膠封片倒置相差顯微鏡下觀察并拍照記錄。
1. 4. 3 Ⅱ型膠原免疫組織化學染色 對各代關節軟骨細胞用爬片技術，取出細胞爬片，放于染色架上，滴加正常非免疫動物血清室溫下孵育 10 min.除去血清，滴加 1 ︰ 1 000 兔抗人Ⅱ型膠原一抗，4℃過夜。PBS 液沖洗 3 次，每次 5 min.滴加生物素標記的二抗，室溫下孵育 10 min,PBS 液沖洗 3次，每次 5 min.DAB 顯色，蘇木精復色，無水乙醇脫水，中性樹膠封片倒置相差顯微鏡下觀察并拍照記錄。
1. 4. 4 細胞增殖檢測 取生長良好的第 2,4,6 代 OA 軟骨細胞采用 CCK8 法繪制軟骨細胞生長曲線。在 96 孔板中接種細胞懸液 100μL,7 000 個細胞； 每孔加入 10μLCCK-8; 將培養板在培養箱內孵育 2 h; 在 460 nm 測定吸光度。
共 3 塊 96 孔板，隔 2 d 換液。于第 1、3、5、7、9、11 天觀察，加入 CCK-8 后振蕩 5 min 后酶標儀上測吸光度值，波長為取細胞數的平均值作為結果，然后繪制折線圖來描繪細胞的生長情況。
2 結 果
2. 1 細胞培養形態學變化 倒置顯微鏡觀察發現，軟骨原代細胞呈不均勻分布的多角形或條狀，形態欠規則，似短成纖維細胞樣，生長速度偏慢，約 13 d 左右可達 80%,具有細胞密度依賴性。培養至第 3 代時即已出現長梭形細胞，且生長速度開始下降，4 代后較為明顯，至第 6 代細胞形態幾乎全部變為長梭形，似成纖維細胞樣（ 見圖 1） .
2. 2 細胞形態學染色鑒定 甲苯胺藍染色均可見細胞外基質中染色呈陽性，原代軟骨細胞正染以藍色為主，經多次傳代后，甲苯胺藍染色明顯減少，4 代時排列仍密集，至 6 代以后甲苯胺藍染色藍色表現很少（ 見圖 2） .
Ⅱ型膠原免疫組化染色細胞核染色呈陽性，表現為棕黃色。隨著傳代次數的增加，棕黃色明顯減弱，陽性率降低，至第 4 代細胞僅有棕黃色著色顯著減少，至第 6 代時已基本呈陰性，無棕黃色。
2. 3 生長曲線 利用 CCK8 法繪制軟骨細胞生長曲線，明確了該細胞的指數生長時間。第 2 代 OA 軟骨細胞經培養后，1 ~5 d 為潛伏期，增殖速率很慢，第 5 天細胞開始加速增殖，7 d 左右增殖最明顯，呈指數增長。第 9 天后，細胞增長明顯放緩。第 4、6 代 OA 軟骨細胞的生長曲線與第 2 代細胞基本相同，但增殖峰值低，指數增長期時間短，且這一變化隨傳代次數的增多而愈發明顯（ 見圖 3） .
3 討 論
由于種屬的差異，來源于動物的關節軟骨細胞其生物學特征與人關節軟骨細胞的生物學特征差異較明顯，且經一些因素作用而來的骨關節炎模型并不能模擬出人骨關節炎的多因素影響，所以不能完全代替人類的軟骨細胞進行實驗研究。而從臨床上經體外分離、培養所獲得的人骨關節炎關節軟骨細胞，與人體的生理狀態相符合，其研究結果可信、可靠，對臨床進行骨關節炎的防治研究更具有指導意義。隨著醫學技術的發展，已經有眾多的學者開始由動物關節軟骨細胞的體外培養及誘導成模轉向從臨床獲得人關節炎軟骨細胞再進行實驗研究[11-13].本實驗采用胰蛋白酶及Ⅱ型膠原酶聯合消化法獲得了大量高純度、高活性的人關節軟骨細胞。研究結果發現 4 代以內細胞生長良好，6 代以后出現大量的去分化現象； 形態學、免疫組織化學染色顯示細胞培養也證實 4 代以內可以保持表型的穩定。
軟骨細胞及周圍軟骨基質共同構成了關節軟骨的主要成分。與其他結締組織不同，軟骨不包含血管，軟骨細胞是主要靠滑膜分泌的關節液所營養，且成熟的軟骨細胞被完全包裹在大量的細胞外基質中而無法遷移或增生。因此，相對于其他結締組織軟骨生長和修復更加緩慢[14].軟骨細胞無特異性標志物，但是軟骨細胞可以產生大量基質成分氨基多糖和Ⅱ型膠原。Ⅱ型膠原為軟骨細胞的基因表達產物，可以通過其來確定軟骨細胞的表型。本實驗通過對軟骨細胞分泌的氨基多糖的甲苯胺藍染色和Ⅱ型膠原的免疫組織化學染色，再結合取材部位和培養過程中的觀察，證實所培養的細胞為人的軟骨細胞。
研究發現在人正常軟骨細胞體外培養過程中，由于細胞外環境與體內內環境差異的存在，軟骨細胞的表型難以保持長久的穩定，進而細胞逐漸喪失其生物學特性，細胞形態、分化、增殖等都將發生一系列變化[15-17].童迅等[18]研究顯示，正常人的軟骨細胞在培養 5 代以內細胞生長良好，生物學特性明顯，5 代以后出現去分化現象，骨關節炎軟骨細胞增殖慢，生物學特征退變更早。胡炯等[19]研究顯示，骨性關節炎軟骨細胞形態似成纖維細胞，生長速度明顯較正常軟骨細胞慢，Ⅱ型膠原免疫組化和甲苯胺藍染色均較弱，傳至第 4代軟骨細胞生物學特性基本消失。我們的研究顯示，OA 軟骨細胞在體外培養時隨傳代次數的增加，細胞會逐漸走向衰老和去分化； 甲苯胺藍染色原代軟骨細胞正染陽性，傳代至 4代后，甲苯胺藍染色顯著減少，至 6 代以后甲苯胺藍染色藍色陽性率很低； Ⅱ型膠原免疫組化染色細胞核染色呈陽性，隨著傳代次數的增加，至第 4 代細胞顯著減少，至第 6 代時已基本無棕黃色。這與童訊和胡炯等人的研究一致，表明骨關節炎軟骨細胞分泌的氨基多糖和Ⅱ型膠原隨傳代次增加出現過早退變的生物學特征。
本研究的細胞生長曲線圖顯示隨著傳代次數的增加，細胞的增值峰也逐漸降低，2 代細胞較 4 和 6 代細胞具有更好的分化能力。這種 OA 軟骨細胞增殖特性提示我們4 代以內的細胞可能是用于實驗研究的選擇范圍。
總之，本實驗采用胰蛋白酶及Ⅱ型膠原酶聯合消化法可成功從體外分離出骨關節炎軟骨細胞，2 代的骨關節炎軟骨細胞具有高增值峰，4 代以內的軟骨細胞表型穩定，生長良好。這種 OA 軟骨細胞增殖特性提示我們 2 或3 代軟骨細胞是用于實驗研究的最佳選擇，為進一步研究人軟骨細胞的其他生物學特性及骨關節炎的發病機制提供了實驗基礎。本研究的不足之處在于沒有使用正常關節軟骨細胞進行對照研究。
參考文獻：
[1] Creamer P,Hochberg MC. Osteoarthritis[J]. Lancet,1997,350（ 9076） : 503-508.
[2] Isogai N,Kusuhara H,Ikada Y,et al. Comparison of dif-ferent chondrocytes for use in tissue engineering of car-tilage model structures[J]. Tissue Eng,2006,12 （ 4） :691-703.
[3] Alsalameh S,Amin R,Gemba T,et al. Identification ofmesenchymal progenitor cells in normal and osteoarthri-tis human articular cartilage [J]. Arthritis Rheum,2004,50（ 5） : 1522-1532.
[4] Beatriz C,Noboru T,Shuhei O,et al. Autophagy is aprotective mechanism in normal cartilage and its aging-related loss is linked with cell death and osteoarthritis[J]. Arthritis Rheum,2010,62（ 3） :791-801.
