2001年人類基因組測序完成，基因中所含有的大量的功能信息越來越受到人們的關注。為了解這些復雜的人類密碼的含義，對單個基因功能的研究也顯得越來越重要。然而，對于真核生物基因片段而言，其序列中除了包含具有功能、能表達的外顯子之外，還含有很多調控序列等內含子，如此一個基因片段則可能大至幾十或上百Kb.

雖然現今有相應的載體，如BAC（人工染色體）和PAC（P1人工染色體）能裝載如此大量的基因信息，但是要找到這些基因片段的限制性內切位點，并在體外對其進行長距離的片段擴增的難度比較大[1、2].

Red/ET重組技術是以傳統的同源重組技術為基礎，但是，相對于普通的同源重組技術而言，它具有簡單、快速、高效等特點，而且整個重組過程不需要經過體外擴增階段，這樣可以避免外界環境引起的不必要的突變。

1 傳統同源重組

自然發生的同源重組是兩個DNA分子之間進行片段交換，從而使序列重排。1956年，在大腸桿菌中，A John Clark發現了兩種與同源重組有關的酶，RacA和RecBCD.在同源重組發生的時候，RecA結合DNA單鏈或雙鏈，對雙鏈DNA進攻，把原來配對的互補鏈分開，并嘗試自身與被入侵DNA鏈配對。當配對成功后，RecA蛋白脫落?；蛘咴赗ecBCD的引導下，使目標DNA解旋，以便使外源DNA分子插入并在RecA的幫助下進行重組。當兩條鏈發生重組時，會產生holliday中間體，該中間體在重組完成時由RuvAB和RecG蛋白進行拆分。至此，形成兩條含有異源序列的雙鏈DNA.在質?；蚴删w轉入大腸桿菌的實驗中，當同源區段小于75bp時會使重組率顯著降低。但是實際上，在RecA重組系統中，要求同源臂的長度在1kb左右，且反應條件要求比較苛刻。

2 Red/ET 同源重組技術

Red/ET同源重組系統，其實是Red同源重組系統和ET同源重組系統的總稱，其中ET系統于1998年由Stewart等在大腸桿菌中誘導的Rac噬菌體中發現，隨后又在λ噬菌體中發現了Red系統。在這兩個系統中，整個重組過程由DNA重組酶參與而不需要限制性內切酶，且對同源臂長度的要求低，僅需35-50bp的同源序列，而傳統的RecA同源重組則需要大約1kb的同源序列。并且該系統介導的整個同源重組過程都是在細內進行，避免了因胞外反應引起的不必要突變。

2.1 ET 同源重組系統

該系統于1998年由Stewart等在大腸桿菌中誘導的Rac噬菌體中發現，其所需的單側同源臂長度僅為35-50 bp,該噬菌體通過表達蛋白RecE和RecT來介導重組反應。其中RecE蛋白有5′-3′外切酶活性，能夠從5′-3′端依次切下雙鏈DNA上的堿基，使DNA分子形成3′粘性末端。RecT是一種單鏈結合蛋白，保護單鏈核苷酸不被降解，能在退火時指導單鏈入侵。在ET系統中，帶有同源臂的外援DNA分子可以直接通過同源臂找到同源區域，然后進行DNA的互換。

2.2 Red 同源重組系統

Red重組系統也是由Stewart的實驗小組在λ噬菌體中發現，它是由Redα和Redβ兩種蛋白組成的同源重組系統。Redα由三個蛋白質亞基組成，中間的空隙能消化DNA分子，與ET系統中的RecE蛋白相似，它具有5′-3′端核酸外切酶活性，能形成3′粘性末端。

Redβ也是一種單鏈結合蛋白，作用相似于ET系統中的RecT蛋白。

3 重組原理及操作

3.1 Red/ET 同源重組的原理

根據Red/ET中Redα及RecE、Redβ及RecT的功能，推測了該同源重組系統的作用機理。當帶有同源臂的外源DNA分子進入到大腸桿菌中時，Redα或RecE發揮其5′-3′端核酸外切酶功能，由5′端開始降解DNA序列，產生的3′粘性末端，這時外源DNA具備了與受體DNA發生重組的條件。產生的粘性末端被RecT或者Redβ結合35bp的單鏈核苷酸序列，同時防止被細胞內存在的核酸內切酶降解[i].在DNA退火時，含有粘性末端的3′單鏈進攻雙鏈DNA片段，重組。發生重組的兩條DNA鏈經過剪切和DNA聚合酶的修復作用后，重組DNA形成，外源DNA成功導入受體DNA中[3].

3.2 操作方式

該重組技術在的操作方式主要有兩種。（1）建立含有將γ基因的ET系統或Red系統的質粒，在實施重組時將三者共同導入受體分子中，共同表達。（2）直接在受體菌中篩選出能進行Red/ET重組的菌株。前者的重組成功率更高，但是當受體分子不容易接受外源DNA時，后一種方式就顯得更加便捷。

4 系統優化

最初Red/RT系統采用的是pDAB-ETγ依托型質粒載體，在該載體中，recE、recT以及γ基因分放在PBAD、EM7和Tn-5啟動子下共表達。在之后構建的pDAB-ETg和pDAB-gba載體中，RecE/RecT/Redγ和Redα/Redβ/Redγ被放在PBAD啟動子后面共表達，該啟動子受L-阿拉伯糖誘導調控。但是在實際應用過程中卻發現了一些問題。

首先，在發生重組后該載體不容易從宿主細胞中去除，影響后續的研究工作。為此，研究人員開發了溫控性質粒。其原理是將Redα/Redβ與γ基因放在含有PL啟動子和cI857基因的載體上，然后導入大腸桿菌中表達。在溫度為30℃時，cI857基因啟動PL啟動子，使Red系統不表達。當溫度為42℃時，cI857基因的作用被抑制，Red系統得以重新表達。

其次，由于工程用大腸桿菌一般都缺乏RecA蛋白，在這樣的情況下重組的發生率會降低。在最初的目的中使RecA缺失，其目的是為了讓真個表達系統中外源DNA復制更穩定。但是為了避免RecA缺失對重組率的影響又從新引入了RecA蛋白[3].

再次，γ基因在表達的過程中不易控制，它的過度表達會影響RecBCD的活性，進而影響質粒表達的穩定性（Gam蛋白與RecBCD蛋白結合只是抑制了RecBCD對核酸的降解能力，但仍然能對同源重組起促進作用）。為了解決這樣的問題，研究者將γ基因和Red/ET系統共表達，從而對γ基因進行調控。

此外，有研究發現，γ基因上的5′端的非翻譯區域對重組效率有很大的影響。將含有5′端的非翻譯區突變的基因與Redα和Redβ連接，可以很大程度的提高重組效率。

5 在載體構建中的應用

2006年Osterrieder[ii]等運用Red/ET系統和反篩選系統（I-SceI蛋白）設計出了兩步重組方法。首先設計一個含有I-SceI同源臂的基因片段，通過Red/ET系統轉入載體之中。構建好的重組載體通過誘導I-SceI蛋白的表達，使雙鏈產生切口。切口處可作為同源臂，進行下一次的異源重組。這種兩步重組系統大大的提高了重組的精確性。

在對致病菌基因的研究中，朱善元等對禽致病大腸桿菌的ibeA基因進行缺失，用缺失該基因的大腸桿菌粘附與侵襲人微血管內皮細胞。結果顯示，缺失ibeA基因的大腸桿菌與微血管內皮細胞的粘附能力顯著下降，侵襲率也顯著下降[4].Murphy等還通過該技術對致病大腸桿菌的有毒基因進行敲除，以為免疫制劑的進一步研究提供理論方法[5].

蘭德松等，利用Red/ET同源重組技術，通過兩步重組法構建了禽流感A/Goose/Guangdong/3/96（H5N1）毒株的血凝素（HA） 基因的重組火雞皰疹病毒。他們的研究為新型禽流感重載活性疫苗的開發奠定了基礎[6].

6 展望

Red/ET同源重組技術的使用，為外源基基因的重組表達提供了一種快捷、簡單的方法。在抗生素的開發中，使抗生素異源表達，提高產量也是研究中的重點。該技術除了能方便的運用于抗生素的異源表達方面，還可以通過對基因簇的修飾、重排、刪除等來創造新的抗生素?，F在已有該方面的研究。

參考文獻

[1]Zhao S. A Comprehensive BAC Resource[J]. Nucleic AcidsResearch, 2001, 29（1）： 141-143.

[2]馬先勇，姚開泰。同源重組技術研究進展[J].生物工程進展，1996,16（3）：16-23.

[3]王軍平，張友明。Red/ET重組及其在生物醫學中的應用[J].生物工程學報，2000,18（12）：502-506

[4]朱善元，王健，左偉勇等。禽致病性大腸桿菌ibeA基因缺失及特征分析[J].中國獸醫學報，2009,29（12）：1578-1581.

[5]Murphy KC, Campellone K G, , et al. Lambda Red-MediatedRecombinologenic Engineering of Enterohemorrhagic andEnteropathogebic E. coli[J]. BMC Molecular Microbiol, 2003, 4（1）：1-12.

[6]蘭德松，石星明，王云峰等。利用Red/ET技術構建表達H5亞型禽流感病毒HA 重組火雞皰疹病毒[J].微生物學報，2009,49（1）：78-84.